一般血液
- 靜脈採檢：
- 乾洗手：戴手套抽血，幫每一位病人抽血前皆須乾洗手，洗手步驟為內外夾攻大力。
- 身份辨識：詢問病人姓名及生日，並核對所有採檢管上的資料與病人口述相同。並確實於床邊進行無紙化三刷(刷自己工號、病人手圈、採檢管條碼)。
- 備註確認：確認採檢管Barcode上的容器別與備註事項，如冰浴等。
- 綁止血帶：止血帶綁的位置在抽血處上方一個拳頭處，止血帶不可綁超過1分鐘，綁帶朝上，若綁過久須鬆開休息後重綁。
- 找血管：找血管順序為正中肘靜脈è頭靜脈è貴要靜脈。可請病人輕輕握拳，或輕拍血管使其明顯。手肘找不到血管可找手背。不可用力拍打血管、不可從手腕手掌表面、點滴同側手臂、人工血管、乳房切除同側手臂、硬化血管處、大範圍疤痕處抽血。
- 選擇針具：依抽血部位與血管粗細決定針具，並在病人面前拆掉封套。手肘使用雙向針。手肘細血管與手背使用翼型蝴蝶針。
- 消毒下針：以乾棉枝沾酒精於抽血部位用力消毒，不可手搧加速乾燥。若消毒後發現棉枝髒汙須再拿新棉枝重新消毒至乾淨。消毒後若想再次觸碰血管，則觸碰血管的手指頭需先消毒。若檢驗Alcohol或Methyl alcohol需用碘液消毒。血瓶瓶口使用75%酒精消毒，血瓶抽血時靜脈須三消。以左手拇指於抽血部位左下方繃緊皮膚以固定血管。使抽血管的走向朝向自己，下針前請病人深呼吸，針孔朝上下針，下針角度約30度。
- 抽血管順序：需氧血瓶è厭氧血瓶è藍頭è黃頭(SST)èAl專用管(藍頭紅標)è綠頭ègas空針èTB專用管(灰è綠è黃è紫)è紫頭èHg As專用管(藍頭紫標)è灰頭èACD管。使用蝴蝶針抽藍頭管前須先接另一支藍頭管進行排氣，以免量不足。
- 結束抽血：移除採檢管è拔止血帶è於抽血處壓棉球è拔針è蓋上安全側蓋後立即卸針è貼上膠帶，告知病人手需伸直並按壓5分鐘不要揉。
- 混勻檢體：抽血後將所有採檢管上下顛倒8次輕輕混勻，並檢查血液已和管壁抗凝劑確實混和。須避免用力搖晃以免溶血。
- 注意事項：
- 不得採血的部位①洗腎患者人造血管同側手臂。②乳癌患者切除乳房的同側手臂。③靜脈輸注治療的同側手臂。④燒傷痊癒後大範圍疤痕處⑤水腫、血腫、循環不佳或已受傷的肢體。
- 止血帶繫上後超過1分鐘仍未進行採檢時，應先鬆開，避免血液成分有所變化。
- 採血太用力而產生氣泡或針頭未拔除而直接打入採血管或搖震太厲害皆容易造成檢體溶血。
- 採檢應儘量使用21或22號針具，避免檢體溶血。
- 須空腹8小時採檢的項目：Glucose（AC）、TG、ApoA1、ApoB、Homocysteine。
- 採血順序：
- 使用真空採血時多試管採血順序：
血液培養需氧瓶→血液培養厭氧瓶→藍頭管→黃頭管(ACD)→金黃頭管(SST)→Al/Cr專用管→Quantiferon-TB Nil(灰蓋)→TB(紅蓋)→Mitogen(紫蓋) →綠頭管→紫頭管→Hg、As、Pb專用管→灰頭管。 - 使用頭皮針採檢血液培養甁時，先採需氧瓶，再採厭氧瓶，避免管路內空氣影響厭氧菌生長。
- 使用空針採檢血液培養甁時，先將針管內殘存空氣趕到針筒末端，讓針筒前端充滿血液，先將血液打至厭氧瓶，再打至需氧瓶，注意勿注入空氣至厭氧瓶。
- 毛細管採血：
- 在嬰兒不易採檢或只需少量血液時，可利用毛細管進行採血。
- 適用於毛細管採血項目：血型(至少需2支毛細管血)。
- 採取的部位為足跟。
- 足跟採血時，須先按摩足跟部位，再穿刺側面部位；為避免骨膜發炎影響嬰兒成長後的行走能力，不可以穿刺中央部位。
- 穿刺後輕輕擦拭掉第一滴血，以防止消毒液、酒精或組織液的混入，造成檢體溶血。
體液(ㄧ張檢驗單分裝ㄧ支檢體為原則)
- 體液檢驗包括胸水、腹水、心包膜液、關節液及腦脊髓液等，通常由醫師在嚴格的消毒條件下以無菌技術採集，請於採檢後一小時內送檢。
- 胸水、腹水、心包膜液之採檢：先將15mL無菌離心管以液態肝素浸潤管壁(於15mL無菌離心管加入0.5mL液態肝素，蓋上蓋子後上下翻轉8次使管壁均勻塗佈液態肝素，再開蓋將液態肝素丟棄即可)。將抽取之體液裝入已使用液態肝素浸潤管壁後的15mL無菌離心管，每管的檢體量建議8~10mL。
- 關節液採檢：關節液檢體是由醫師以針筒執行單次採集後注入無菌離心管，每管至少3mL。若檢驗項目為關節液常規檢查(Synovial Fluid Routine)，則無菌離心管需先以液態肝素(heparin)浸潤管壁(管內加入0.5mL液態肝素，蓋上蓋子後上下翻轉8次使管壁均勻塗佈液態肝素，再開蓋將液態肝素丟棄)，之後再加入檢體，藉由肝素的抗凝作用可避免檢體凝固無法鏡檢。採檢後須盡速送檢以免細胞溶解。
- 腦脊髓液之採檢：由醫師執行腰椎穿刺後，將採集的CSF檢體依序裝入編號1、2、3、4的15mL無菌離心管，每管至少1mL以上。第1管適用於生化與血清學檢驗，第2管適用於微生物檢驗，第3管適用於體液鏡檢，第4管適用於細胞學檢查。若第1管混濁且有出血狀，表示有穿刺出血造成汙染，此時可改收集採檢中開始澄清之採檢管，再依序送檢生化與血清學、微生物學、鏡檢學、細胞學。
請於採檢一小時內送。
#1：生化學血清或其他特殊檢查生化學血清或其他特殊檢查
#2：微生物學檢查
#3：細胞計數
精液
- 收集前請連續禁慾2-7天。
- 以手淫方式(勿用保險套)，將全部一次的精液量直接排到40 mL透明盒中。
- 在門診檢驗衛教單上註明精液取出時間，於30分鐘內送至檢驗科。
- 收檢時間：星期一至星期五：0800-17:00。週六、週日及國定假日不受理檢查。
尿液
- 一般尿液：
- 將尿液前段排掉丟棄，再用塑膠尿杯取中段尿。
- 將10 mL的中段尿液倒入尿液尖底試管，若有門診檢驗衛教單，請連同衛教單一起送檢。
- 尿液收集後應立即送檢，室溫下不超過2小時；若無法立即送檢，請將尿液保存於2-8℃，以不超過4小時為原則。
- 由留置導尿管收集：
- 用橡皮筋或止血鉗夾住尿袋引流管約10-15分鐘，以無菌棉枝沾取優碘消毒預抽取處，再以75﹪酒精將優碘擦淨。
- 利用10 mL空針以無菌技術抽取尿液5-10 mL。將抽出之尿液注入尿液尖底試管內，鬆開橡皮筋或止血鉗，將導尿管固定妥當。
- 尿液收集後應立即送檢，在室溫下不超過2小時；若無法立即送檢，請將尿液保存於2-8℃冰箱，以不超過4小時為原則。
- 24小時不加酸的尿液：【例如：上午8點至隔天上午8點】
- 請在第一天上午8點(不管有無尿意)，將尿液完全排出丟棄，之後的尿液全部收集至尿桶中；待至隔日上午8點，不管有無尿意皆需再收集一次，收集過程集尿桶需置於冰箱冷藏。
- 完成後紀錄24小時尿液總量(觀察尿桶旁刻度)填寫在檢驗單上，混合均勻，吸取10 mL尿量至第1管尿液圓底試管，將尿管連同檢驗單一起送檢。
- 若留取時間未達24小時而尿桶已滿(1700 mL)時，請將此次尿量紀錄下來，混合均勻，利用吸管吸取10 mL尿量至第1管試管內；之後倒掉尿桶中所有的尿液，利用此空桶繼續留取尿液直到24小時，記錄此桶總量，再加總之前的尿量，此為24小時總尿量，混合均勻，利用吸管吸取10 mL尿量至第2管試管內，讓總體積為20 mL，將尿管連同檢驗單一起送檢。
- 24小時需加酸的尿液：【例如：上午8點至隔天上午8點】
- 檢驗項目需加酸者，請憑門診檢驗衛教單至檢驗科領取2管6N盬酸，在收集到第一次尿液時，將盬酸 (其中1管)倒入尿桶中跟尿液混合。
- 請在第一天上午8點時(不管有無尿意)，將尿完全排出丟棄，之後的尿液全部收集至尿桶中；待至隔日上午8點，不管有無尿意皆需再收集一次，收集過程集尿桶需置冰箱冷藏。
- 完成後紀錄24小時尿液總量(觀察尿桶旁刻度)填寫在門診檢驗衛教單上，混合均勻，取出10 mL尿液至第1管試管內，將尿管連同門診檢驗衛教單一起送檢。
- 若收集24小時，總尿量僅一桶，則請病人將第二管6N鹽酸歸還檢驗科；若留取時間未達24小時而尿桶已滿(1700 mL)時，請將此次尿量紀錄下來，混合均勻，利用吸管吸取10c.c尿量至第1管試管內；之後倒掉尿桶中所有的尿液後加入第2管鹽酸，利用此空桶繼續留取尿液直到24小時，記錄此桶總量，再加總之前的尿量，此為24小時總尿量，混合均勻，利用吸管吸取10 mL尿量至第2管試管內，讓總體積為20 mL，將尿管連同門診檢驗衛教單一起送檢。
- 6N鹽酸具有危險性，請小心使用，請勿沾染到皮膚或吞食。
糞便
- Routine：將糞便排在乾淨的容器中，用糞便檢查瓶內的塑膠棒挖取糞便(約一粒花生米大小)裝入瓶內蓋緊後送檢，檢體請勿使用衛生紙包裹或沾到水或尿液。
- Parasite OVA(Concentration Method)：憑醫令單向檢驗部門領取糞便濃縮瓶，糞便採集量約拇指大小/約半瓶，請勿沾到馬桶水或尿液。
- 潛血(化學法)：糞便收集前兩天請禁食肉類食物、維他命C、鐵劑等。女性月經期間請暫停此項檢查。
- 潛血(EIA定量法)：
- 將淺綠色的蓋子旋開，取出採便棒。
- 在整條大便上以輕劃方式刮取檢體，刮取量約為將溝槽完全覆蓋即可。
- 再將採便棒放回糞便管內旋緊蓋子，激烈搖晃混合後送檢。
- 遇痔瘡出血及女性月經期間，請暫停此項檢查。
- 免疫潛血糞便管請至檢驗科領取。
血液氣體分析：請採檢血液檢體0.6 mL ，以冰浴送檢。